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Metodo dello zucchero a velo per la varroa

Un metodo di campo, che non uccide le api, per rilevare Varroa destructor in una famiglia di api. Le api vengono ricoperte di zucchero a velo in un barattolo, gli acari si staccano e vengono fatti cadere nell'acqua per contarli. Le api tornano vive nella famiglia.

Scegli una giornata calda e asciutta

Se possibile, esegui la procedura in una giornata calda e asciutta. Il tempo umido o piovoso riduce l'efficacia del metodo: lo zucchero assorbe l'umidità e forma grumi, e gli acari si staccano con più difficoltà.

Materiali

  • Vaschetta di plastica bassa per raccogliere le api
  • Piatto piano (~1 cm d'acqua dentro)
  • O un barattolo di vetro (~720 mL) con coperchio a vite dotato di una rete da ~3 mm, oppure un dispositivo Varroa EasyCheck
  • Cucchiaio da tavola
  • Zucchero a velo
  • Panno asciutto

Prelievo del campione e procedura dell'esame

1. Preleva ~300 api

  1. Scuoti le api da 3-5 telaini di covata in una vaschetta di plastica bassa e mescolale delicatamente.

  2. Preleva dalla vaschetta ~300 api (circa 85 mL di api, ~mezza tazza) e mettile nel barattolo (o nel Varroa EasyCheck).

    Non prelevare la regina

    Fai attenzione a non raccogliere la regina insieme al campione.

  3. Chiudi bene il barattolo con il coperchio a rete.

2. Prima copertura con lo zucchero

  1. Aggiungi 1 cucchiaio colmo di zucchero a velo nel barattolo, facendolo passare attraverso la rete.
  2. Fai rotolare il barattolo per ~1 min in modo da ricoprire le api in modo uniforme.
  3. Lascia fermo il barattolo per max 30 secondi.

3. Primo distacco degli acari in acqua

  1. Riempi un piatto piano con circa 1 cm d'acqua.

  2. Scuoti energicamente il barattolo sopra il piatto con l'acqua per 15 secondi. Capovolgi il barattolo/dispositivo chiuso e scuotilo con forza sopra l'acqua, come una saliera.

    Lo zucchero a velo si scioglie nell'acqua e non copre più gli acari.

4. Secondo ciclo (ripetizione)

Ripeti la procedura con lo stesso campione di api:

  1. Aggiungi 1 cucchiaio colmo di zucchero a velo nel barattolo.
  2. Fai rotolare il barattolo per ~1 min.
  3. Lascia fermo il barattolo per max 30 secondi.
  4. Scuotilo energicamente sopra il piatto con l'acqua per 15 secondi.

5. Conta e registra

  1. Conta gli acari nel piatto con l'acqua.
  2. Fai una foto di tutto il piatto.
  3. Nell'app Apisense: Aggiungi... → Esame → tipo di esame: Test dello zucchero: aggiungi una foto e inserisci il numero di acari della varroa.
  4. Rimetti con cura le api nella loro famiglia.
  5. Prima dell'uso successivo, pulisci il barattolo/dispositivo da residui di zucchero, acari, polvere e umidità con un panno asciutto.

Inserimento nell'app Apisense

  • Numero totale di acari (somma dei due cicli)
  • Foto del piatto con l'acqua e gli acari
  • Dimensione del campione (300 api come impostazione predefinita)
  • Data dell'esame

Inserisci solo il numero esatto di acari caduti e aggiungi una foto del piatto. Non calcolare una percentuale. L'infestazione la calcoliamo noi: numero di acari / 300 = infestazione in %. Esempio: 9 acari / 300 = 3%.

Lo stesso esame nel programma stagionale

Questo esame fa parte anche del programma “Salute delle famiglie di api, primavera 2026”: vedi Protocollo 1: monitoraggio della varroa per il percorso esatto di inserimento nell'app (Aggiungi... → Esame → tipo di esame: Test dello zucchero) e le indicazioni sulla spedizione dei campioni.

Bibliografia

  1. Rinderer TE, De Guzman LI, Sylvester HA. Reexamination of the accuracy of a detergent solution for varroa mite detection. American Bee Journal. 2004;144(7):560-562.
  2. Branco MR, Kidd NA, Pickard RS. A comparative evaluation of sampling methods for Varroa destructor (Acari: Varroidae) population estimation. Apidologie. 2006;37(4):452.
  3. Dietemann V, et al. Standard methods for varroa research. J Apic Res. 2013;52(1):1-47. doi:10.3896/IBRA.1.52.1.09
  4. Taylor MA, Goodwin RM, McBrydie HM, et al. Relative effectiveness of methods that sample worker honey bees to estimate Varroa destructor populations in Apis mellifera colonies. Apidologie. 2025;56(14). doi:10.1007/s13592-024-01143-y